上海基因编辑脱靶检测技术

时间:2024年05月05日 来源:

CRISPR/Cas系统是细菌和古细菌在不断进化的过程中产生的适应性免疫防御机制,它应用CRISPR RNA(crRNA)以碱基互补的形式引导相应的Cas蛋白识别入侵的外源基因组,并对其DNA进行剪切,用以保护自身的基因组免受外源核酸如噬菌体、病毒等的干扰和破坏。经过人为改造后,可在真核细胞中实现高度灵活且特异的基因组编辑,通过设计特异性向导RNA(Single guide RNA, sgRNA)序列与靶序列进行碱基配对,从而引导Cas蛋白结合到靶序列处,行使DNA切割功能,然后利用细胞的非同源性末端连接(Non-homologous end joining, NHEJ)或同源重组(Homologous recombination,HR)修复机制对断裂的DNA进行插入缺失(Indel)、修复(Repair)或替换(Replacement)。由于其相对于锌指核酸酶(ZFNs)和转录jihuo因子样效应物核酸酶(TALENs)技术更易于操作,而且更高效,因而被广运用于对基因组特定位点进行靶向编辑。检测脱靶效应比较好的方法:CIRCLE-seq。上海基因编辑脱靶检测技术

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细胞经基因修饰后会改变其生物学特性,同时也会带来新的安全性风险,如基因编辑脱靶风险、载体插入突变风险、载体重组风险、表达的转基因产物的风险等。细胞经基因修饰后会改变其生物学特性,同时也会带来新的安全性风险,如基因编辑脱靶风险、载体插入突变风险、载体重组风险、表达的转基因产物的风险等。基于基因修饰细胞的产品种类繁多、各有特点,除上述一般技术要求外,还应基于产品的性进行相应的特殊考虑。本指导原则列举了以下三种情形的特殊考虑。高精度脱靶检测企业定量脱靶检测,推荐唯可生物,实验实力强,专业性高,检测效率高,结果准确率高。

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对于基因修饰细胞zhiliao产品,充分的非临床研究是为了:(1)阐明基因修饰的目的、功能以及产品的作用机制,明确其在拟定患者人群中使用的生物学合理性;(2)为临床试验的给药途径、给药程序、给药剂量的选择提供支持性依据;(3)根据潜在风险因素,阐明毒性反应特征,预测人体可能出现的不良反应,确定不良反应的临床监测指标,为制定临床风险控制措施提供参考依据。因此,应充分开展非临床研究,收集用于风险获益评估的信息,以确立拟开发产品在目标患者人群中预期具有合理的、可接受的获益风险比,同时为临床试验的设计和风险控制策略的制定提供支持性依据。

2022年2月下旬,在医麦客举办的年度盛会——“蓄力前行,助航新生——2021 CSGCT基因与细胞zhiliao医学峰会”期间,唯可生物创始人兼CEO-吴宁博士分享了唯可生物在基因zhiliao赛道针对安全性展开的技术服务,让在场行业大咖和观众真正领会到ISA(integration site analysis,整合位点插入分析)领域国际金标准技术的优势,以及基因编辑定量脱靶检测、载体拷贝数检测、载体质量控制等多项检测技术的行业意义。吴宁博士毕业于德国海德堡大学,德国国家aizheng研究中心(DKFZ),并于2021年3月同几位合伙人联合创立了上海唯可生物科技有限公司。其创始团队拥有的检测技术包括源于DKFZ,Manfred Schmidt团队的LAM-PCR(linear amplification-mediated Polymerase Chain Reaction,线性扩增阳离子介导的聚合酶链反应),LTA-PCR(Ligation-mediated target amplification Polymerase Chain Reaction,连接介导的目标扩增聚合酶链反应)和TES(Target enrichment sequencing,靶向富集测序)体系,并基于此形成的多项全球lingxian的基因zhiliao安全性检测技术。基因编辑治疗过程中安全性评价,即脱靶效应的检测。

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围绕大家关心的CRISPR基因编辑安全性问题,我们首先对CRISPR脱靶位点检测技术进行一次大盘点,在sgRNA设计阶段需要如何做才能够尽可能地避免脱靶现象的发生。较简单的脱靶位点检测方法是全基因组测序(WGS),但在实际使用中,即使测序深度达到100X,也很难发现一些低频率的脱靶位点,同时测序成本却非常高。为弥补WGS的这些缺陷,常见的脱靶位点检测技术都需要对脱靶位点进行捕获富集,来提高检测灵敏度,降低测序成本。按照实验原理的不同,脱靶位点检测技术可以分为细胞外、细胞内和其他特殊方法这3类。脱靶检测方法,推荐唯可生物,实验实力强,专业性高,检测效率高,结果准确率高。无锡crispr/cas9脱靶检测CRO

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目前鼓润已掌握了该项技术,简述如下:1、CRISPR与dsODNtag整合的实验技术及高通量测序建库流程将靶向于目标基因组位点的CRISPR质粒与dsODNtag以核电转的方式同时转染入真核细胞,CRISPR造成基因组双链断裂后,dsODNtag将整合入断点处,作为后续分析在靶与脱靶情况的标记。转染后3天收集细胞的DNA进行高通量建库。2、GUIDE-seq生信分析方法1)搭建了高通量测序的数据分析流程。2)利用该技术分析了CRISPR靶向编辑某细胞系基因的在靶与脱靶情况。其中一例样品的分析结果如图4所示:Sequencesofoff-targetsitesidentifiedbyGUIDE-seq.Theintendedtargetsequenceisshowninthetoplinewithcleavedsitesshownunderneathandwithmismatchestotheon-targetsiteshownandhighlightedincolor.GUIDE-seqsequencingreadcountsareshowntotherightofeachsite.3)利用PCR扩增技术联合Sanger测序鉴定了分析出的脱靶位点。上海基因编辑脱靶检测技术

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