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2mg组、4mg组、6mg组lh水平均上升，同样，只有2mg组有明显升高(p＜)，如图3所示。表3表4②体重变化：(mean±sd)，如图4所示：2mg组(连续注射7天)与空白组相比，大鼠体重***下降(p＜，注射第2天开始)。3mg组(连续注射7天)与空白组相比，大鼠体重***下降(p＜，注射第4天开始)，直至第12天*存活1只大鼠。4mg、6mg组(第1、8天注射)与空白组相比，大鼠体重分别在***次及第二次注射后的有***下降(p＜)，4mg组体重在停止给药后4天与空白组无差异。③卵巢重量：如表5、图5所示，2mg、6mg组大鼠在经过顺铂注射后卵巢重量相比对照组，都有不同程度缩减，其中2mg组卵巢重量明显减轻(p＜)，4mg、6mg组无明显差异。表5④动情周期观察(阴道涂片)：3mg组动物死亡时间早，无完整的动情周期。如表、图6所示。正常大鼠动情周期4-5天。分为四个阶段，动情前期：撇圆形有核上皮细胞占绝大多数，白细胞和角化上皮细胞很少(图a)。动情期：角化上皮细胞占多大多数，由散在增至集白细胞和有核上皮细胞很少(图b)。动情后期：片状角化上皮细胞，有核上皮细胞和白细胞3种都有，无太大差异(图c)。动情间期：白细胞占绝大多数，有核上皮细胞和角化上皮细胞很少(图d)。表6⑤病理结果：如图7所示。大鼠疾病建模请找上海东寰。闵行区正规疾病动物模型建模

在cns，pirb的功能和下游抑制性信号通路仍然未被阐明，因此迫切需要pirb的细胞和动物模型。目前对于pirb基因功能的研究，多采用可溶性的pirb的胞外段(pirbextracellularpeptide，pep)和抑制剂，或者采用慢病毒转染。前者受到是否能够透过血脑屏障和抑制剂效率的影响，后者慢病毒转染在原代细胞和在体的转染效率比较低，使研究pirb的功能受到极大的限制。为解决这些问题，我们通过crispr/cas9技术建立了pirb基因敲入小鼠，将pirb基因敲入c57bl/6j的rosa26位点，为研究pirb在免疫系统或者神经系统的作用和机制提供了很好的工具。技术实现要素：本发明的目的在于提供pirb基因敲入的小鼠动物模型。松江区咨询疾病动物模型建模实验动物向小型化的发展趋势更有利于实验者的日常管理和实验操作。

其中可以看出手术侧后爪的缩足阈值较手术前及对侧后爪有***降低，且标准误区间非常小。图4是表1的数据通过曲线图的方式展现。结果显示：大鼠在术后***天即出现手术侧后爪敏感，施加轻微的重量(4g左右)都会引起缩足表现，这说明其痛阈明显降低，对轻微的刺激均呈现抬脚，舔舐后足等痛觉过敏表现。这种表现维持至术后至少28天。而对侧后爪在术前和术后缩足阈值变化不大，基本保持在20-25g。实施例3、模型的应用采用实施例1中描述的方法对两组大鼠均进行了造模，l型棒的材料选择的是h62黄铜或聚乳酸等不受磁场干扰、置入体内不会对神经造成化学刺激以及具有一定可塑性的材料。在造模后第七天应用重复经颅磁刺激(rtms)***大鼠，其中一组接受了真的磁刺激，为磁刺激组；另一组接受了假的磁刺激，为假刺激组。结果显示，磁刺激组的大鼠缩足阈值较假刺激组明显提高，如图5所示。这表明磁刺激缓解了神经压迫造成的疼痛，该模型可以用于磁刺激***的研究。以上详细描述了本发明的较佳具体实施例。应当理解，本领域的普通技术无需创造性劳动就可以根据本发明的构思作出诸多修改和变化。因此。

PMID：15082495、7561688)①HE染色②关节侧视图③PCR鉴定、二、糖尿病相关动物模型1.糖尿病***1）模型构建（PMID：30826357）使用链佐星（STZ）注射ApoE-/-小鼠，建立糖尿病ApoE-/-小鼠模型，同时与ApoE-/-小鼠采用高脂喂养18周2）模型检测指标（PMID：29107826、28345659）3）生化指标检测4）超声检测5）主动脉染色检测2.糖尿病心肌病1）诱发性DCM模型模型构建（PMID：29732743）实验动物：大鼠方法：各大鼠一次性腹腔注射链脲佐菌素150mg·kg-1(STZ用mol·L-1，pH，现配现用)，并给予高脂饲料进行喂养。①模型检测指标血糖检测②HE染色③超声心电图2）自发性1型DCM模型3）自发性2型DCM模型3.糖尿病视网膜病变1）模型构建PMID：30862093实验动物：小鼠方法：糖尿病雄性db/db（+/+Leprdb/J）小鼠。喂养至21周2）模型检测指标①胶质原纤维酸性蛋白染色②TUNEL和HE染色DR组视网膜组织内核层及外核层结构松散，细胞排列紊乱GCL，神经节细胞层;INL，内核层;ONL，外核层三、动物模型构建总结1.临床资料合理性在纳入临床资料时，需关注特定疾病患者的流行病学趋势，即疾病易发年龄，男女比例等，同时需考虑是否与体重、基因表达等具有相关性。2.模型合理性选择合适，简便。确定研究疾病目的了解影响疾病发生的内在与外在因素。

是从侧面展示的压迫元件插入椎间孔的结构示意图。图3是术后大鼠四肢表现情况。图4是术后28天大鼠的双下肢缩足阈值变化曲线图。图5是重复经颅磁刺激对大鼠背根神经压迫模型的影响。具体实施方式以下通过具体的实施例对本发明的技术方案做进一步的描述。以下的实施例是对本发明的进一步说明，而不是限制本发明的范围。实施例1、模型的制备1、腹腔注射1％戊巴比妥钠(40mg/kg)麻醉大鼠(220-250g)，背部剃毛，碘伏消毒背部皮肤，俯卧位固定于动物手术台上，铺无菌巾。2、于大鼠腰4到骶1水平左侧作一2-3cm纵行切口，切开皮肤，钝性分离椎旁肌至横突上方，暴露腰4椎间孔，腰5椎间孔(椎旁肌可用自制拉钩保持分离状态)。3、将2根***端11为4mm，第二端12为2mm，直径为，第二端12置于腰4椎间孔及腰5椎间孔外。如图1和2所示，可以看到腰4锥体1、腰5锥体2、腰6锥体3、l型棒10、腰4神经根4和腰5神经根5的位置关系。当l型棒10的***端11插入腰4锥体1的腰4椎间孔后，会对腰4神经根4起到压迫作用；同样的，当l型棒10的***端11插入腰5锥体2的腰5椎间孔后，会对腰5神经根5起到压迫作用。从而达到模拟腰椎间盘突出压迫神经根的目的，制备得到大鼠慢性背根神经压迫模型~疾病动物模型建模价格。南通Balbc裸鼠疾病动物模型建模

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另外pirb在髓细胞和b细胞的表达随细胞分化增加。在免疫系统，pirb作为主要组织相容性复合物1(classimajorhistocompatibilitycomplex，mhc1)的受体，参与免疫调节，包括中性粒细胞和巨噬细胞整合素通路、细胞毒性t淋巴细胞、b淋巴细胞和体液—细胞免疫应答等。pirb的前两个细胞外免疫球蛋白结构域(d1-d2)介导mhci和pirb的结合。在系统(centralnervoussystem，cns)，pirb在许多脑区包括皮层、海马、小脑和嗅球都有表达，但在成年脊髓不表达。在细胞层面，pirb不仅表达于神经元，也表达于星形胶质细胞。在许多病理条件下，如脑外伤、中风和cns，pirb的mrna和蛋白表达水平增加。闵行区正规疾病动物模型建模

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