Recombinant Human CD69/CLEC2C Protein
EndoS糖苷内切酶S在抗体药物偶联物（ADCs）研究中的应用主要体现在糖链定点偶联技术上。通过上海药物所的研究，开发了一种新颖的糖链定点ADC制备策略，利用EndoS2这种糖苷内切酶，可以将小分子细胞毒药物“一步”定点连接到抗体的糖基化位点，实现了糖链定点ADC化合物的制备。定点偶联技术相比传统的随机偶联具有更好的方法指数，能够提高ADC的均一性和稳定性，是当前ADC领域的研究热点之一。在抗体的Fc结构域N297位，这是一个保守的糖基化位点，通过在该位点引入细胞物质，可以形成具有优势的糖链定点ADC化合物（glycosite-specificADCs,gsADCs）。此外，EndoS2对多样化的LacNAc修饰显示出良好的兼容性，能够高效获得功能修饰的糖工程抗体，并且可以用于抗体的内吞成像研究及糖链延伸等功能化研究。研究人员通过这种“一步”制备策略得到的糖链定点ADC化合物，在结构均一性、亲水性、体外稳定性以及体外活性方面表现良好，并且在体内瘤抑制活性方面，相比阳性对照ADC化合物，在低载药量的情况下具有更强的抑制效果。EndoS酶的这些应用，不仅展示了其在简化ADC制备流程中的潜力，还有助于推动定点ADC药物的深入发展，为未来的生物药物开发提供了新的思路和方法。Cas12a还可以高效地在一些重要的工业链霉菌菌株中产生编辑，这些菌株由于毒性而不能使用SpCas9进行编辑。Recombinant Human CD69/CLEC2C Protein,His Tag
在蛋白质糖基化分析中，除了N-糖苷酶F（PNGaseF），还有其他几种酶也发挥着重要作用，具有各自的优势：1.**EndoH糖苷内切酶H**：这种酶可以水解高甘露糖型N-连接糖链，通常用于区分高甘露糖型和复杂型糖链。2.**EndoS糖苷内切酶S**：EndoS能够从IgG重链的壳二糖结构之间切除N-连接糖，有助于分析抗体的糖基化模式。3.**FastPNGaseF**：这是一种经过优化的PNGaseF，能在数分钟内对抗体、免疫球蛋白、融合蛋白以及其他糖蛋白进行彻底和快速的去糖基化，简化了实验流程，同时保持了灵敏度和重复性。4.**O-糖苷酶O-glycosidase**：用于去除O-连接的糖链，这对于O-糖基化蛋白质的分析至关重要。5.**三氟甲基磺酸(TFMS)法**：这是一种化学去糖基化方法，可以用于释放糖链，尤其在某些难以使用酶法去除糖链的情况下。6.**质谱法**：虽然不是酶，但质谱法是分析糖链结构的强大工具，可以结合酶法或化学法释放的糖链进行详细分析。7.**核磁共振法(NMR)**：NMR技术可以确定糖链的构型、连接位置、分支和微观多样性，是糖链立体化学结构分析的重要方法。这些酶和方法各有优势，可以根据实验的具体需求和糖基化类型的不同进行选择，以获得比较好的分析结果。
EndoS酶在抗体药物偶联物（ADCs）研究中的具体应用主要体现在糖链定点偶联技术方面。根据上海药物研究所的研究进展，EndoS酶被用于实现定点ADC化合物的“一步”制备，这是一种新颖的糖链定点ADC制备策略。该策略利用了新颖截短型糖结构的药物-连接子和野生型糖苷内切酶EndoS2，将小分子细胞毒药物直接定点连接到抗体糖基化位点，从而克服了传统糖链定点ADC制备策略的限制。具体来说，研究人员通过筛选发现，EndoS2酶可以将二糖底物LacNAc转移至去糖抗体N297位糖基化位点，并且LacNAc半乳糖6号位唾液酸化修饰不影响EndoS2的转糖基化活性。这一发现使得EndoS2和LacNAc的组合可以直接实现野生型抗体的糖基化改造，且EndoS2对多样化LacNAc修饰的兼容性，可以高效获得多样性功能修饰的岩藻糖化或去岩藻糖化的糖工程抗体。此外，研究人员还利用叠氮化修饰的LacNAc底物实现了抗体糖基化位点的“一步”叠氮化修饰，并通过点击化学反应偶联药物-连接子，实现了“两步”制备得到定点ADC化合物。
重组增强型绿色荧光蛋白（RecombinantEnhancedGreenFluorescentProtein,EGFP）是一种用于生物科学研究的工具。以下是重组EGFP的一些特点和应用：1.**高荧光强度**：EGFP比野生型GFP具有更强的荧光，这使得它在成像和检测时更为敏感和有效。2.**改进的折叠效率**：EGFP在生理温度（如37℃）下的折叠效率更高，这有助于在细胞内快速形成成熟的荧光蛋白。3.**单一激发峰**：与野生型GFP相比，EGFP具有单一的激发峰，这简化了成像条件的设置，并提高了信号的稳定性。4.**适合多种生物系统**：EGFP可以用于多种生物系统，包括细菌、酵母、植物和哺乳动物细胞。5.**多功能性**：EGFP可以作为报告基因用于基因表达分析，也可以作为融合标签用于蛋白质定位和动态研究。6.**非糖基化**：在大肠杆菌中表达的重组EGFP是非糖基化的，这有助于减少翻译后修饰的复杂性。7.**纯度高**：重组EGFP通常具有高纯度，适合用于各种生物化学和分子生物学实验。8.**稳定性**：EGFP的荧光稳定性好，适合长时间观察和成像。9.**分子量**：重组EGFP的分子量约为26.9kDa，由239个氨基酸构成。Cas12a同源物能够识别更简单的PAM序列（如5-TTN），这使得基因组的覆盖率显著提高。
使用PreScissionProtease进行蛋白质切割时，为保证高纯度和高活性，需要考虑以下关键因素：1.**特异性切割位点**：确保融合蛋白中包含PreScissionProtease特异性识别的序列，以实现精确切割。2.**酶与底物的比例**：适当比例的酶量对于高效切割至关重要，过多或过少的酶都可能影响切割效率和纯度。3.**反应条件**：包括温度、pH和反应时间等，这些条件需要优化以确保酶的活性和选择性。通常，PreScissionProtease在4°C下进行酶切。4.**缓冲液兼容性**：使用与PreScissionProtease兼容的缓冲液，避免使用可能抑制酶活性的离子或化学物质。5.**蛋白浓度**：确保融合蛋白有足够的浓度，以提高切割效率和减少样品损失。6.**酶切后的分离**：切割后，需要有效分离目的蛋白和切割下来的标签，通常利用亲和层析等方法。7.**避免蛋白降解**：在实验过程中添加蛋白酶抑制剂，以防止蛋白降解酶对目的蛋白的降解。8.**避免蛋白质聚集**：在切割过程中，应避免条件导致蛋白质聚集或沉淀，这可能会影响纯度和活性。9.**避免氧化**：在蛋白质处理过程中，添加抗氧化剂如DTT或TCEP，以防止半胱氨酸残基的氧化。10.**清洁的实验环境**：确保实验器材和环境的清洁，避免微生物污染和核酸污染。Cpf1是一种新发现的类2/型V CRISPR-Cas DNA内切酶，在不同系统中显示出一系列的活性。Recombinant Human KIR2DL1 Protein,His-Avi Tag
FnCas12a系统的脱靶效应较低，这对于减少非目标效应和提高物质的安全性至关重要。Recombinant Human CD69/CLEC2C Protein,His Tag
SpCas9蛋白（来自化脓性链球菌的Cas9蛋白）在基因编辑中的主要作用是作为核酸酶，能够精确地切割目标DNA序列。以下是SpCas9在基因编辑中的几个关键步骤和作用：1.**识别和结合**：SpCas9蛋白与一个单导向RNA（sgRNA）结合，形成RNP复合物。这个复合物能够识别并结合到基因组中与sgRNA互补的特定DNA序列。2.**PAM序列识别**：SpCas9需要一个称为原间隔子相邻基序（PAM）的特定序列作为识别目标DNA的先决条件。对于SpCas9，这个PAM序列通常是5'-NGG-3'。3.**DNA切割**：一旦RNP复合物与目标DNA结合，SpCas9就会在PAM序列的3个碱基对的上游位置切割DNA双链，产生一个双链断裂（DSB）。4.**引发DNA修复**：DNA双链断裂触发细胞的DNA修复机制，包括同源定向修复（HDR）和非同源末端连接（NHEJ）。研究人员可以利用这些修复机制来插入、删除或替换特定的DNA序列。5.**基因修改**：通过HDR，可以在断裂的DNA两端引入特定的DNA模板，从而实现精确的基因编辑。而NHEJ通常会导致小的插入或缺失（indel），这可以用来产生基因的敲除或敲入。6.**提高编辑效率**：为了提高SpCas9的编辑效率，研究人员可能会使用优化的sgRNA设计、蛋白质工程或嵌合融合蛋白等策略。